細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法:1.脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法陽離子脂質(zhì)體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi),形成DNA脂復(fù)合物,也能被表面帶負(fù)電的細(xì)胞膜吸附,再通過融合或細(xì)胞內(nèi)吞進入細(xì)胞。脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細(xì)胞中,是目前實驗室較方便的轉(zhuǎn)染方法之一,其轉(zhuǎn)染率較高,優(yōu)于磷酸鈣法。由于脂質(zhì)體對細(xì)胞有一定的毒性,所以轉(zhuǎn)染時間一般不超過24小時。常用細(xì)胞類型:cos-7 、BHK、NIH3T3 、Hela等2.電穿孔轉(zhuǎn)染法電流能夠可逆地?fù)舸┘?xì)胞膜形成瞬時的水通路或膜上小孔促使DNA分子進入胞內(nèi),這種方法就是電穿孔。當(dāng)遇到某些脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染效率很低或幾乎無法轉(zhuǎn)入時建議用電穿孔法轉(zhuǎn)染。一般情況下,高電場強度會殺死50%-70% 的細(xì)胞?,F(xiàn)在針對細(xì)胞死亡開發(fā)出了一種電轉(zhuǎn)保護劑,可以較大的降低細(xì)胞的死亡率,同時提高電穿孔轉(zhuǎn)染效率。在瞬時轉(zhuǎn)染質(zhì)粒中往往都含有一個報告基。南京唐山細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
細(xì)胞轉(zhuǎn)染實驗簡介實驗步驟:1、細(xì)胞傳代(1)試驗準(zhǔn)備:200ul/1mlTip頭各一盒(以上物品均需高壓滅菌),酒精棉球,廢液缸,試管架,微量移液器,記號筆,培養(yǎng)皿,離心管。(2)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。(3)用Tip頭加入1mlTrypsin液,消化1分鐘(37。C,5%CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細(xì)胞完全從壁上脫落下來為止。(4)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng)。(5)用頭多次吹吸,使細(xì)胞完全分散開。(6)將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。(7)用培養(yǎng)液重懸細(xì)胞,細(xì)胞計數(shù)后選擇0.8X106個細(xì)胞加入一個35mm培養(yǎng)皿。(8)將合適體積完全培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細(xì)胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。(9)將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉(zhuǎn)染。天津正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑總?cè)旧w重組或基因調(diào)控變化等而演化。
轉(zhuǎn)染的注意事項:瞬時和穩(wěn)定表達DNA轉(zhuǎn)染后,轉(zhuǎn)入基因的表達可以在1-4天內(nèi)檢測到。*有一部分轉(zhuǎn)入細(xì)胞的DNA被轉(zhuǎn)運到細(xì)胞核內(nèi)進行轉(zhuǎn)錄并較終輸出mRNA到細(xì)胞質(zhì)進行蛋白合成。幾天內(nèi),大部分外源DNA會被核酸酶降解或隨細(xì)胞分裂而稀釋;一周后就檢測不到其存在了。瞬時表達分析檢測未重組質(zhì)粒DNA上基因的表達。因此,表達水平與位臵無關(guān),不會受到周圍染色體元件的影響。瞬時表達分析所需的人力和時間比穩(wěn)定表達少,但因為DNA攝入效率和表達水平在不同實驗中差異較大,實驗必須很小心。為了進行穩(wěn)定表達,轉(zhuǎn)入的基因必須能和細(xì)胞同步復(fù)制。在轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒自發(fā)整合到宿主基因組上時就會如此。在一小部分轉(zhuǎn)染的細(xì)胞中,加入的DNA通過重組整合到基因組上。包含整合DNA的細(xì)胞很少,必須通過對藥物的抗性篩選進行擴增或通過表型變化進行鑒定。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染效率低下的幾個大坑:1.試劑過期有時候轉(zhuǎn)染效率低下,還要考慮會不會存在試劑過期的情況。毛博當(dāng)年做轉(zhuǎn)染整整半年,百思不得其解。較后發(fā)現(xiàn),原來是Lipofectamine 2000過期了。換了之后,立馬成功。根據(jù)我的經(jīng)驗,盡量使用開封半年內(nèi)的,因為過了半年后,就算沒有過失效期,但是細(xì)胞毒性較大增加,而轉(zhuǎn)染效率卻較大下降。千萬不要為了省錢,影響實驗進度哈。2.未加血清轉(zhuǎn)染后未及時加入血清,會導(dǎo)致細(xì)胞大量死亡。一般要在轉(zhuǎn)染后的4-6小時換液且換為有血清的培養(yǎng)基。根據(jù)毛博的經(jīng)驗,其實也可以在原來的無血清培養(yǎng)基里面滴加血清。這個時候,較好不要換液,不要打擾細(xì)胞,讓它安安靜靜地休息。但是也不能過早加入血清。過早的話,會引起未轉(zhuǎn)染的細(xì)胞瘋狂生長。那么,什么是較佳時機呢?在20%的細(xì)胞變圓的時候,就是加血清的較佳時機。選擇傳代次數(shù)較低并處于對數(shù)生長期的細(xì)胞進行轉(zhuǎn)染。
細(xì)胞轉(zhuǎn)染的原理、操作步驟以及小技巧:一、脂質(zhì)體(Liposome)轉(zhuǎn)染方法原理脂質(zhì)體作為體內(nèi)和體外輸送載體的工具,已經(jīng)研究的十分普遍,中性脂質(zhì)體是利用脂質(zhì)膜包裹DNA,借助脂質(zhì)膜將DNA導(dǎo)入細(xì)胞膜內(nèi)。帶正電的陽離子脂質(zhì)體,DNA并沒有預(yù)先包埋在脂質(zhì)體中,而是帶負(fù)電的DNA自動結(jié)合到帶正電的脂質(zhì)體上,形成DNA-陽離子脂質(zhì)體復(fù)合物,從而吸附到帶負(fù)電的細(xì)胞膜表面,經(jīng)過內(nèi)吞被導(dǎo)入細(xì)胞。優(yōu)點:與其它方法相比,有較高的效率和較好的重復(fù)性,它適用于把DNA轉(zhuǎn)染入懸浮或貼壁培養(yǎng)細(xì)胞中,是目前條件下較方便的轉(zhuǎn)染方法之一。能與核酸的磷酸根通過靜電作用,將DNA分子包裹入內(nèi)。天津正規(guī)細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
建議選擇50%~80%區(qū)間密度進行細(xì)胞轉(zhuǎn)染。南京唐山細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑
轉(zhuǎn)染的注意事項:用于蛋白生產(chǎn)的細(xì)胞的轉(zhuǎn)染可以在添加有血清或無血清培養(yǎng)基中進行。但更傾向于使用無血清培養(yǎng)基表達蛋白,因為血清蛋白會干擾下游表達蛋白的純化。無血清培養(yǎng)基一般針對某一特定細(xì)胞類型優(yōu)化并有幾類無血清培養(yǎng)基不需要添加血清,一般含有不均一的或大量的蛋白(但比添加血清的培養(yǎng)基低得多)。無蛋白培養(yǎng)基不含蛋白但可能含有不明成分的抽提物,限定化學(xué)成分的培養(yǎng)基不含有蛋白或未知組成的成分。多種多樣的配方使您可以選擇較適合您應(yīng)用的一種。在含血清時轉(zhuǎn)染的細(xì)胞可以適應(yīng)無血清培養(yǎng)基,無蛋白培養(yǎng)基或限定化學(xué)成分的培養(yǎng)基。在部分情況下(如293-F,293-H,COS-7和CHO-S),對于已適應(yīng)無血清或無蛋白培養(yǎng)基的細(xì)胞,可以使用其培養(yǎng)基進行轉(zhuǎn)染。其他一些無血清培養(yǎng)基包含克制陰離子脂質(zhì)體介導(dǎo)轉(zhuǎn)染的成分,在這些情況下,有必要在諸如D-MEM或OPTI-MEMⅠ等培養(yǎng)基中進行培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染。南京唐山細(xì)胞高效轉(zhuǎn)染試劑